写在前面前述，我们通过《安装 | 比较基因组系列之一 - WGDI 软件安装与配置》一文，带大伙安装和配置了我们 WGDI 软件。接下来，我们直切主题，从实例数据开始，手把手带大家进行比较基因组分析，并做具体结果解读。
比较基因组学的分析工作常常都是从一张点图开始的。一张清晰的点图能反应出来非常多的信息。
初探 WGDIWGDI 所有的分析，从一个配置文件开始。对于点阵图，我们可以通过运行
wgdi -d ? >> total.conf进而查看配置文件模板
cat total.conf[dotplot]blast = blast filegff1 =  gff1 filegff2 =  gff2 filelens1 = lens1 filelens2 = lens2 filegenome1_name =  Genome1 namegenome2_name =  Genome2 namemultiple  = 1score = 100evalue = 1e-5repeat_number = 20position = orderblast_reverse = falseancestor_left = noneancestor_top = nonemarkersize = 0.5figsize = 10,10savefig = savefile(.png,.pdf)下面，逐个参数给大家解读。

• blast = blast file，即设置输入的 blast 文件，一般使用物种A蛋白序列全集 比对到 物种B蛋白序列全集，得到blastp结果文件（后续给大家演示）
• gff1 = gff1 file，即基因位置信息文件，记录每个基因的具体信息，gff 文件使用 Tab键 分割，分别为 chr，id，start，end，stand，order，old_id。其中，order是每条染色体从1开始的排序，old_id 和后面列的信息不读取。
  

3.lens1 = lens1 file，染色体长度信息，记录每条染色体的长度。三列分别为染色体号，染色体bp长度，染色体基因个数。scaffold或contig 可以等效于chr
其他参数，不重要。主要是blastp结果过滤以及出图参数。
准备示例数据从上述可以看出，输入数据事实上可以直接从两个文件开始准备。

• 基因组序列文件
• 基因结构注释信息
  

文件可直接从公开数据库 Phytozome 上下载，此处为v10的
ls -1total.confVitis_vinifera.genome.fnaVitis_vinifera.genome.gff3首先，准备染色体长度信息
perl -0076 -ane '@F=map{s/[>\r\n]//gr}@F;$id=shift @F;print $id,qq{\t},length (join q{},@F),qq{\n} if $id'  Vitis_vinifera.genome.fna > Grape.chr.length随后，统计每条染色体上的基因数目（注意，此处统计的是 gene 的数目，如果你的注释信息文件没有 gene 的数目，那么你可能要统计 mRNA 的数目，并注意是否有可变剪切本等）
perl -lane 'next if /^#/;$count{$F[0]}++ if $F[2] eq "gene";END{print join qq{\t},$_,$count{$_} for sort keys %count}' Vitis_vinifera.genome.gff3 > Grape.gene.counts合并两个文件，得到 WGDI 所需的 len 文件
perl -lane 'if($flag){print join qq{\t},$_,$count{$F[0]}}else {$count{$F[0]}=$F[1]}$flag=1 if eof(ARGV)' Grape.gene.counts Grape.chr.length |sort -k1,1V > Grape.len准备 gff 文件Emmm，perl one-liner 嘛...
# 此处直接使用 mRNA，葡萄注释信息中每个基因只对应了一个mRNAperl -lane 'next unless $F[2] eq "mRNA";/ID=([^;]+)/;push @geneInfo,[$F[0],$1,$F[3],$F[4],$F[6]];END{$preChr="";for(sort {$a->[0] cmp $b->[0] || $a->[2] <=> $b->[2]} @geneInfo){if($preChr ne $_->[0]){$c=0;$preChr=$_->[0]};print join qq{\t},@{$_},++$c}}' Vitis_vinifera.genome.gff3 > Grape.gff准备 BLAST 文件本例中，我们做的是葡萄内部的，所以只需要提取葡萄的蛋白序列文件，比对到自身即可
gffread Vitis_vinifera.genome.gff3 -g Vitis_vinifera.genome.fna -y Grape.pep.fa# 清除终止密码子perl -i -lpe 's/\.$// unless /^>/' Grape.pep.faperl -i -lpe '$_=$1 if /(>\S+)/' Grape.pep.fa比对到自身，推荐 BLASTP，因为准确度也很重要。此处使用 DIAMOND，主要是为了加速
./diamond makedb --in Grape.pep.fa --db Grape.pep.fa./diamond blastp --db Grape.pep.fa --query Grape.pep.fa --outfmt 6 --evalue 1e-5 --max-target-seqs 20 --out Grape.blastp绘制点阵图修改配置文件，设置输入的两个文件
[dotplot]blast = Grape.blastpgff1 =  Grape.gffgff2 =  Grape.gfflens1 =  Grape.lenlens2 = Grape.lengenome1_name =  Grapegenome2_name =  Grapemultiple  = 1score = 100evalue = 1e-5repeat_number = 20position = orderblast_reverse = falseancestor_left = noneancestor_top = nonemarkersize = 0.5figsize = 10,10savefig = Grape.dot.png随后运行即可
wgdi -d total.confblast  =  Grape.blastpgff1  =  Grape.gffgff2  =  Grape.gfflens1  =  Grape.lenlens2  =  Grape.lengenome1_name  =  Grapegenome2_name  =  Grapemultiple  =  1score  =  100evalue  =  1e-5repeat_number  =  20position  =  orderblast_reverse  =  falseancestor_left  =  noneancestor_top  =  nonemarkersize  =  0.5figsize  =  10,10savefig  =  Grape.dot.pngfindfont: Font family ['Arial'] not found. Falling back to DejaVu Sans.findfont: Font family ['Arial'] not found. Falling back to DejaVu Sans.查看当前目录，可以看到输出 png 文件Grape.dot.png，直接打开或者下载到本地打开即可
上述，position = order 参数的意思是，基因按照排序位置可视化，我们也可以直接按照具体染色体上的物理位置进行可视化，使用 position = end
那么为什么要用物理位置可视化？这个与后续 核型分析，祖先染色体重构等相关，继续埋雷，感兴趣的就等后续推送....
与此类似，还有mutiple 参数，表示最优匹配格式，同样与更高维度的比较基因组分析相关。还是埋雷....哈哈
回到主题，任意修改 lens1 和 lens2 的染色体的数量和顺序，可以得到任意染色体间的点图。
比如，我们可以直接去掉 random 染色体碎片
perl -i -lne 'print unless /random/' Grape.len点图解读首先，明确 WGDI 点图规则：根据左侧基因组的基因，最优同源（相似度最高）的点为红色，次好的四个基因为蓝色，剩余部分（同源基因有限制个数）为灰色。

• 点图需要横向看和纵向看：这个点图是物种自身比对，所以只需横向看。片段深度应该为 2，但最好同源个数为1，即红色点没有集中分布在某个片段上。常常可以认两个片段很相似，再加上自身。所以，认定为最近发生的加倍为三倍化。除此之外，蓝色或灰色的片段很少有，表明更古老的加倍很不明显。
• 对角线上，本不应该出现片段。自身比自身显然是最好匹配，这些点（WGDI）已经去掉了。所以，其由串联重复造成的，即该基因临近位置的基因相似度很高，为同源基因，打在了对角线附近。可以通过计算这些串联重复的ks值，估算重复片段的爆发时间。
• 最后，事实上，点图是后续跑共线性的基石。score， evalue， repeat_number 判定的同源点的数量是共线性打分矩阵的来源。
  

写在最后往往，越是高阶的分析人员，使用的工具却越是简陋。点图，看似简单 和 粗略。但其蕴含的才是真正全面的比较基因组信息。
更多内容，让我们一起期待后续教程。

写在前面前述，我们通过《安装 | 比较基因组系列之一 - WGDI 软件安装与配置》一文，带大伙安装和配置了我们 WGDI 软件。接下来，我们直切主题，从实例数据开始，手把手带大家进行比较基因组分析，并做具体结果解读。
比较基因组学的分析工作常常都是从一张点图开始的。一张清晰的点图能反应出来非常多的信息。
初探 WGDIWGDI 所有的分析，从一个配置文件开始。对于点阵图，我们可以通过运行
wgdi -d ? >> total.conf进而查看配置文件模板
cat total.conf[dotplot]blast = blast filegff1 =  gff1 filegff2 =  gff2 filelens1 = lens1 filelens2 = lens2 filegenome1_name =  Genome1 namegenome2_name =  Genome2 namemultiple  = 1score = 100evalue = 1e-5repeat_number = 20position = orderblast_reverse = falseancestor_left = noneancestor_top = nonemarkersize = 0.5figsize = 10,10savefig = savefile(.png,.pdf)下面，逐个参数给大家解读。

• blast = blast file，即设置输入的 blast 文件，一般使用物种A蛋白序列全集 比对到 物种B蛋白序列全集，得到blastp结果文件（后续给大家演示）
• gff1 = gff1 file，即基因位置信息文件，记录每个基因的具体信息，gff 文件使用 Tab键 分割，分别为 chr，id，start，end，stand，order，old_id。其中，order是每条染色体从1开始的排序，old_id 和后面列的信息不读取。
  

3.lens1 = lens1 file，染色体长度信息，记录每条染色体的长度。三列分别为染色体号，染色体bp长度，染色体基因个数。scaffold或contig 可以等效于chr
其他参数，不重要。主要是blastp结果过滤以及出图参数。
准备示例数据从上述可以看出，输入数据事实上可以直接从两个文件开始准备。

• 基因组序列文件
• 基因结构注释信息
  

文件可直接从公开数据库 Phytozome 上下载，此处为v10的
ls -1total.confVitis_vinifera.genome.fnaVitis_vinifera.genome.gff3首先，准备染色体长度信息
perl -0076 -ane '@F=map{s/[>\r\n]//gr}@F;$id=shift @F;print $id,qq{\t},length (join q{},@F),qq{\n} if $id'  Vitis_vinifera.genome.fna > Grape.chr.length随后，统计每条染色体上的基因数目（注意，此处统计的是 gene 的数目，如果你的注释信息文件没有 gene 的数目，那么你可能要统计 mRNA 的数目，并注意是否有可变剪切本等）
perl -lane 'next if /^#/;$count{$F[0]}++ if $F[2] eq "gene";END{print join qq{\t},$_,$count{$_} for sort keys %count}' Vitis_vinifera.genome.gff3 > Grape.gene.counts合并两个文件，得到 WGDI 所需的 len 文件
perl -lane 'if($flag){print join qq{\t},$_,$count{$F[0]}}else {$count{$F[0]}=$F[1]}$flag=1 if eof(ARGV)' Grape.gene.counts Grape.chr.length |sort -k1,1V > Grape.len准备 gff 文件Emmm，perl one-liner 嘛...
# 此处直接使用 mRNA，葡萄注释信息中每个基因只对应了一个mRNAperl -lane 'next unless $F[2] eq "mRNA";/ID=([^;]+)/;push @geneInfo,[$F[0],$1,$F[3],$F[4],$F[6]];END{$preChr="";for(sort {$a->[0] cmp $b->[0] || $a->[2] <=> $b->[2]} @geneInfo){if($preChr ne $_->[0]){$c=0;$preChr=$_->[0]};print join qq{\t},@{$_},++$c}}' Vitis_vinifera.genome.gff3 > Grape.gff准备 BLAST 文件本例中，我们做的是葡萄内部的，所以只需要提取葡萄的蛋白序列文件，比对到自身即可
gffread Vitis_vinifera.genome.gff3 -g Vitis_vinifera.genome.fna -y Grape.pep.fa# 清除终止密码子perl -i -lpe 's/\.$// unless /^>/' Grape.pep.faperl -i -lpe '$_=$1 if /(>\S+)/' Grape.pep.fa比对到自身，推荐 BLASTP，因为准确度也很重要。此处使用 DIAMOND，主要是为了加速
./diamond makedb --in Grape.pep.fa --db Grape.pep.fa./diamond blastp --db Grape.pep.fa --query Grape.pep.fa --outfmt 6 --evalue 1e-5 --max-target-seqs 20 --out Grape.blastp绘制点阵图修改配置文件，设置输入的两个文件
[dotplot]blast = Grape.blastpgff1 =  Grape.gffgff2 =  Grape.gfflens1 =  Grape.lenlens2 = Grape.lengenome1_name =  Grapegenome2_name =  Grapemultiple  = 1score = 100evalue = 1e-5repeat_number = 20position = orderblast_reverse = falseancestor_left = noneancestor_top = nonemarkersize = 0.5figsize = 10,10savefig = Grape.dot.png随后运行即可
wgdi -d total.confblast  =  Grape.blastpgff1  =  Grape.gffgff2  =  Grape.gfflens1  =  Grape.lenlens2  =  Grape.lengenome1_name  =  Grapegenome2_name  =  Grapemultiple  =  1score  =  100evalue  =  1e-5repeat_number  =  20position  =  orderblast_reverse  =  falseancestor_left  =  noneancestor_top  =  nonemarkersize  =  0.5figsize  =  10,10savefig  =  Grape.dot.pngfindfont: Font family ['Arial'] not found. Falling back to DejaVu Sans.findfont: Font family ['Arial'] not found. Falling back to DejaVu Sans.查看当前目录，可以看到输出 png 文件Grape.dot.png，直接打开或者下载到本地打开即可
上述，position = order 参数的意思是，基因按照排序位置可视化，我们也可以直接按照具体染色体上的物理位置进行可视化，使用 position = end
那么为什么要用物理位置可视化？这个与后续 核型分析，祖先染色体重构等相关，继续埋雷，感兴趣的就等后续推送....
与此类似，还有mutiple 参数，表示最优匹配格式，同样与更高维度的比较基因组分析相关。还是埋雷....哈哈
回到主题，任意修改 lens1 和 lens2 的染色体的数量和顺序，可以得到任意染色体间的点图。
比如，我们可以直接去掉 random 染色体碎片
perl -i -lne 'print unless /random/' Grape.len点图解读首先，明确 WGDI 点图规则：根据左侧基因组的基因，最优同源（相似度最高）的点为红色，次好的四个基因为蓝色，剩余部分（同源基因有限制个数）为灰色。

• 点图需要横向看和纵向看：这个点图是物种自身比对，所以只需横向看。片段深度应该为 2，但最好同源个数为1，即红色点没有集中分布在某个片段上。常常可以认两个片段很相似，再加上自身。所以，认定为最近发生的加倍为三倍化。除此之外，蓝色或灰色的片段很少有，表明更古老的加倍很不明显。
• 对角线上，本不应该出现片段。自身比自身显然是最好匹配，这些点（WGDI）已经去掉了。所以，其由串联重复造成的，即该基因临近位置的基因相似度很高，为同源基因，打在了对角线附近。可以通过计算这些串联重复的ks值，估算重复片段的爆发时间。
• 最后，事实上，点图是后续跑共线性的基石。score， evalue， repeat_number 判定的同源点的数量是共线性打分矩阵的来源。
  

写在最后往往，越是高阶的分析人员，使用的工具却越是简陋。点图，看似简单 和 粗略。但其蕴含的才是真正全面的比较基因组信息。
更多内容，让我们一起期待后续教程。